原理
DNA 溶液是DNA以水合狀態(tài)穩(wěn)定存在，當(dāng)加入乙醇時,乙醇會奪DNA周圍的水分子，使DNA失水而易于聚合。一般實驗中,是加2倍體積的無水乙醇與DNA相混 合,其乙醇的最終含量占67%左右。因而也可改用95%乙醇來替代懈水乙醇(因為無水乙醇的價格遠遠比95%乙醇昂貴)。但是加95%的乙醇使總體積增大,而DNA在溶液中有一定程度的溶解,因而DNA損失也增大,尤其用多次乙醇沉淀時,就會影響收得率。折中的做法初次沉淀DNA時可用95%乙醇代替無水乙醇,最后的沉淀步驟要使用無水乙醇。也可以用0.6倍體積的異丙醇選擇性沉淀DNA.一般在室溫下放置15-30分鐘即可。
材料與儀器
DNA
乙酸鈉 乙醇
EP管 低溫離心機 移液器 -70度冰箱
步驟
1. 酶切前確定待切樣品的濃度, 并選擇合適的限制性內(nèi)切酶和配套Buffer。
2. 在離心管中加入如下成分：
10xBuffer 1ul
待切樣品 xul
酶 0.5-1ul
______________________
加水補足10ul
3. 混勻樣品并短暫離心使樣品沉于管底。
4. 將離心管置于37℃中溫育1-3hr，若待切樣品為PCR 產(chǎn)物，則可將反應(yīng)時間適當(dāng)延長。
5. 用未酶切的質(zhì)粒作為對照，瓊脂糖電泳鑒定酶切結(jié)果。
注：當(dāng)酶切樣品用于回收而不是鑒定時，可按比例適當(dāng)加大反應(yīng)體積。雙酶切可選用二者活性都較高的Buffer 或者通用Buffer，但要注意不能有星反應(yīng)。
注意事項
移去上清液時需要緩慢操作，以免將DNA樣品弄出。
常見問題
乙醇可以任意比和水相混溶,乙醇與核酸不會起任何化學(xué)反應(yīng),對DNA很安全,因此是理想的沉淀劑。
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